主要试剂
1、标本和细胞培养液：同形态学检测法。
2、3H-TbR：比放射性5.5-7.4×10】12Bq/mmol，用时每管加20μl即可，最终浓度为3.7×10】4Bq/ml。
3、闪烁液：取4.0g 2,5-二苯基恶唑（PPO）、0.4g 1,4双（5-苯基恶唑基-2）苯（POPOP）加入1000ml二甲苯中。
4、其他试剂：50.0g/L三氯醋酸、无水乙醇。

操作步骤
1、按形态学方法进行血培养，孵育至72h收获，如用特异抗原代替PHA，则孵育至120h收获。在收获前8h加入3H-TdR。
2、培养完毕，轻轻吸出培养液，在沉淀细胞悬液中加入6ml蒸馏水，低渗破坏红细胞，加入35.0g/L NaCl 2ml调回等渗状态。
3、离心1000rpm 10min，弃上清液。每管加2ml生理盐水后，滴入装在抽滤装置上的49型玻璃纤维滤片中央，用10ml生理盐水冲洗样品管，使其在全部滴在滤片上。
4、滴加50.0g/L三氯醋酸2-3ml，固定样品，再滴加无水乙醇1-2ml脱色和脱水。如果测定标本多，最好用多道细胞收集器进行收获，第2-4步可一次完成。
5、取下滤片，置80℃烘箱30min烘干。
6、将烘干的滤片放入盛有5ml闪烁液的小瓶中，使滴加样品的一面朝上，用液体闪烁仪测其cpm值。

注意事项
1、培养瓶的玻璃质量可影响转化率，故选用中性玻璃的小瓶（可用链霉素或胰岛素瓶代替）或试管。培养瓶应有足够的空间，一般用10ml试管加入2ml培养基较好。
2、放射性核素掺入法的影响因素较多，如细胞数、PHA浓度、培养时间、培养液成分3H-TdP的活性等，故应严格控制实验条件。